دراسة فسلجية للفطرين Penicillium sp و Aspergillus niger المعزولين من بذور فستق الحقل وقدرة البكتريا Pseudomonas fluorescens في تثبيط النمو الشعاعي للفطرين موضع الدراسة. م.م بيداء عبود حسن كلية العلوم جامعة الكوفة الخالصة : أجريت الدراسة في مختبرات قسم علوم الحياة كلية العلوم والتي تناولت دراسة فسلجية للفطرين Penicillium sp و Aspergillus niger المعزولين من بذور فستق الحقل وقدرة البكتريا Pseudomonas fluorescens في تثبيط النمو الشعاعي للفطرين على وسط زرعي صلب أثبتت نتائج هذه الدراسة أن لمستويات الرقم الهيدروجيني PH( ) المختبرة في وسط زرعي سائل تأثيرا على نمو الفطرين اذ ظهر اعلى نمو للفطر A.niger عند الرقم الهيدروجيني )6( اذ بلغت الكتلة الحيوية الجافة غم في حين كان اعلى نمو للفطر Penicillium عند الرقم الهيدروجيني )9( اذ بلغ غم وكان النمو عند قيم الرقم الهيدروجيني 6 و 9 متقاربا إذ بلغ و 53.9 غم على التوالي في حين لم يحدث أي نمو عند الرقم الهيدروجيني ).( بينت نتائج هذا االختبار قدرة الفطرين على النمو في المديات المختلفة من درجات الحرارة مع وجود اختالف في كمية النمو اذ ظهر اعلى نمو للفطر A.niger عند درجة الحرارة 3 م اذ بلغ 63.6 غم في حين كان اعلى نمو للفطر Penicillium عند درجة الحرارة 5 م اذ بلغ 63. غم في حين كانت كمية النمو للفطر A.niger عند درجة الحرارة 5. م و 5 م هي..53 غم و وللفطر Penicillium 536 غم و 53.6 غم على التوالي كما تشير النتائج على قدرة الفطرين موضع الدراسة على النمو عند تراكيز الملح المختبرة ولكن بكميات مختلفة حيث ان نمو الفطرين يزداد بزيادة تركيز الملح اذ كان اعلى نمو للفطرين A.niger و Penicillium عند التركيز 5. غم /لتر اذ بلغ ( 53.9 ) غم على التوالي في حين كانت كمية النمو للفطرين A.niger و Penicillium عند التركيزين ( 65.5 ) غم / لتر ( 5366 و ) 53.6 غم و ( 536..53 ) غم على التوالي وبينت النتائج على قدرة الفطرين موضع الدراسة على النمو في اوساط زرعية مختلفة من حيث التركيب الكيميائي ولكن كمية النمو تختلف من وسط الخر اذ يعتير الوسط PDB وسط مالئم لنمو الفطرين حيث سجل الفطرين A.niger و Penicillium اعلى كمية للنمو فيه اذ بلغ )63.63 ) غم على التوالي في حين كان نمو الفطرين في الوسطين YEB( و ) NB..53 و.18 غم على التوالي للفطر A.niger و 53.6 و.536 غم على التوالي للفطر Penicillium واظهرت النتائج قدرة البكتريا Pseudomonas fluorescens في تثبيط نمو الفطرين حيث بلغت نسبة التثبيط % 655 لكليهما عند التركيز. غم / لتر المقدمة : الفستق نوع من المكسرات التي تعطي كمية كبيرة من السعرات الحرارية مثلها مثل أي نوع من المكسرات االخرى حيث يعطي 655 جرام منها سعرات حرارية بين (.5 6.5( سعرة حرارية والسبب في ذلك راجع إلى ارتفاع نسبة الدهون فيها و يميز ثمرة الفستق أنها تحتوي على نسبة عالية من األحماض الدهنية االحادية غير المشبعة وهي بهذه الصفة تتفوق على بقية المكسرات األخرى حيث يزيد عن %5 من الدهون )الزيوت( الكلية في الثمرة. ( Mahmoud واخرون.55. ) كما ان الفستق يمتاز بارتفاع نسبة الحديد فيه وكذلك الكالسيوم والمغنسيوم والفسفور مقارنة بالمكسرات األخرى و تعتبر ثمار الفستق مصدرا هاما للفيتامينات مثل B2 B1 A1 وتحتوى البذور على زيت ثابت وبروتين وفيتامينات وفوسفور ويدخل فى صناعة الحلوى وتعصر البذور بدون تسخين فينتج الزيت حيث يستخدم بدال من زيت الزيتون فى صناعة المستحضرات الطبية مثل المراهم El-Gendy( واخرون.55. ) 3 ويواجه الفستق مشاكل كثيرة أثناء الجني وبعد تخزينه ونقله ومن أهم تلك المشاكل اإلصابات الفطرية إذ تعد الفطريات Aspergillus و Penicillium من أهم المجاميع الفطرية المعروفة بتأثيراتها على العديد من المحاصيل الزراعية ومن ضمنها الفواكه والخضار وذلك لقدرتها على أنتاج مواد أيضية ثانوية ذات تأثيرات سامة ومسرطنة لإلنسان والحيوان تدعى السموم الفطرية Mycotoxins وتشير معظم الدراسات إلى إن لهذه الفطريات القدرة على إنتاج أكثر من نوع من هذه السموم أثناء نموها Ogawa( 69 Smith واخرون ) 699 3 يفرز فطر. spp Penicillium سموم يطلق عليها Yellowtoxins و Citriovirdin مسببة أمراض مختلفة أهمها تلف الكبد واضطرابات الجهاز العصبي والدوران وغيرها )اكريوس 69 ) أما الفطر Aspergillus فينتج سموم االفالتوكسينات Aflatoxins
والمعروفة بقدرتها على إحداث أمراض كثيرة لإلنسان والحيوان كسرطان الكبد وتورمات األجهزة التناسلية واإلجهاض والنزف الدموي )الهيتي 6996 ) 3 وعلى الرغم من النتائج السريعة والفعالة التي يمكن الحصول عليها نتيجة استخدام المبيدات الكيمياوية في مكافحة األمراض الفطرية إال إن التوسع في استخدامها قد أدى إلى اإلخالل بالتوازن البيئي مما ترتب عليه ظهور أمراض لم تكن معروفة سابقا وان بقايا الكثير منها يكون ساما لإلنسان والحيوان لذا برزت أهمية إعادة التوازن الحيوي بين الكائنات الدقيقة وتنشيط مجموعة كائنات حية ( نباتات إحياء مجهرية ) بشكل عام أو خاص ضد مسبب واحد أو أكثر من مسببات األمراض بما يعرف بالمقاومة الحيوية Biological Control ويرى اغلب الباحثين إن المبيدات اإلحيائية والمستخلصات النباتية ال تقل كفاءة عن المبيدات الفطرية فقد وجد إن بكتريا Pseudomonas fluorescens أظهرت كفاءة عالية في مكافحة العديد من الفطريات اهمها niger Rhizoctonia solani Fusarium graminearum Helminthosporium Penicillium Aspergillus و Pal ( Pythium وآخرون ).556 3 وبالنظر لعدم توفر المواصفات المطلوبة لعملية الجني والنقل وعملية الخزن للفستق في مخازن ذات مواصفات فنية تؤمن عدم إصابة المحصول بالفطريات أجريت هذه الدراسة التي تهدف إلى : 6- عزل وتشخيص الفطريات من بذور فستق الحقل 3.- دراسة تأثير كل من درجة الحرارة ودرجة الحموضة PH( ) والملوحة في نمو الفطريات التي تظهر أعلى تردد في أصابة بذور الفستق 3. - اختبار القدرة التضادية لبكتريا Pseudomonas fluorescens في تثبيط النمو الشعاعي للفطرين موضع الدراسة 3 المواد وطرق العمل : 6- عينات بذور فستق الحقل : ج لبت بذور فستق الحقل من محالت بيع الكرزات من اسواق محافظة النجف حيث تم أنتقاء بذورالفستق من بين ( ) عينات من الكرزات وبوزن 55. غم للعينة الواحدة 3. : البكتريا : Pseudomonas flourescens تم الحصول على البكتريا Pseudomonas flourescens من مختبر ابحاث الفطريات في قسم علوم الحياة - كلية العلوم جامعة الكوفة 3 2: طرائق العمل : 1-2 تحضير االوساط الزرعية : 1-1-2: وسط اكار مستخلص البطاطا والدكستروز تم تحضير الوسط وذلك بأخذ 2 غم من البطاطا بعد غسلها وتقطيعها الى قطع صغيرة تم وضعها في اناء معدني ثم اضيف اليها لتر ماء مقطر وغليت لمدة 3 دقيقة وبعدها رشحت بوساطة قطعة شاش نظيفة واضيف الى الراشح 2 غم/لتر من سكر الدكستروز ونفس الكمية من االكار وع قم الوسط بجهاز الموصدة لمدة 2 دقيقة وبحرارة 121 م وتحت ضغط 1 جو وبعد تبريده اضيف المضاد الحياتي الكلورامفينكول بمقدار 25 ملغم/لتر ( Collee واخرون )1996 3 2-1-2: وسط مستخلص البطاطا والدكستروز ح ضر بنفس الطريقة السابقة ولكن بدون اضافة االكار الى الراشح 3 : 3-1-2 وسط مستخلص الخميرة تم تحضير الوسط حسب طريقة Davis واخرون ) 1984 ( وذلك بأخذ 25 غم من الوسط واضافتها لكل 1 مل من الماء المقطر وع قم الوسط باالسلوب نفسه في الفقرة السابقة 3.--6 : وسط المرق المغذي : حضر حسب تعليمات الشركة المصنعة Himedia ذات المنشا India وع قم الوسط باالسلوب نفسه في الفقرة السابقة 3.-.-. : عزل الفطرين.A niger و Penicillium من بذور فستق الحقل وتشخيصها : تم جلب عينات من االسواق المحلية لحاصل فستق الحقل وعقمت البذور للمحصول سطحيا بمحلول هايبوكلوريت الصوديوم وبتركيز.% ولمدة خمسة دقائق وغسلت بعدها بماء معقم ثم زرعت في اطباق بتري معقمة وحاوية على أغار البطاطا والدكستروز PDA مع اضافة 5 ملغم / لتر االمبيسيلين وذلك لمنع نمو البكتريا حيث وضعت خمسة بذورفي كل طبق اربعة محيطية والخامسة في منتصف الطبق 3 حضنت االطباق بدرجة حرارة. ±.م ولمدة سبعة ايا م )ميخائيل وبيدر.69 ) 3 بعد انتهاء مدة التحضين تم تنقية عزالت الفطرين. niger.a و Penicillium وذلك بنقل قرص من كل مستعمرة وزرعه في طبق PDA جديد وكررت العملية عدة مرات شخصت عزالت الفطر.A niger اعتماد ا على الصفات التصنيفية التي وضعها كل من Raper وFennell )696 ) والفطر Penicillium تم تشخيصه اعتمادا على الصفات التصنيفية التي وضعها ( Pitt 699 ( بعد انتهاء مدة الحضن تم حساب النسبة المئوية لظهور الفطر من خالل المعادلة التالية:-
عدد عينات التي ظهر فيها الفطر Krebs ( 1 Χ ˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉ الفطر = النسبة 3 (1978 لظهور المئوية عدد العينات الكلية.-.-. : حفظ عزالت الفطريات المعزولة والمشخصة : ن ميت العزالت المشخصة في انابيب حاوية كل منها على وسط PDA وبصورة مائلة وحضنت بدرجة حرارة )2±25( م ولمدة سبعة ايام ثم ح فظت في الثالجة لحين استخدامها في التجارب الالحقة 3.-.-- : تقييم كفاءة البكتريا Pseudomonas fluorescens في تثبيط النمو الشعاعي للفطرين A.niger. و Penicillium بطريقة الخلط مع الوسط الزرعي: تم تحضير الوسط الزرعي )PDA( بالطريقة نفسها الموضحة في الفقرة )1-1-2( ووزع في ثالثة دوارق سعة 5 مل وبمعدل 25 مل لكل دورق عقمت الدوارق في جهاز الموصدة )Autoclave( بدرجة حرارة 121 م وضغط 1 جو لمدة 2 دقيقة وبعدها تركت لتبرد حيث اضيفت تراكيز البكتريا )6 Ps. fluorescens. ) غم/لتر وبواقع تركيز واحد لكل دورق ثم ر جت الدوارق جيدا بعدها ص بت محتويات كل دورق في 65 اطباق وحضنت جميع االطباق بدرجة حرارة ) 2±3 (م لمدة 24 ساعة Leben( واخرون 1987( بعدها قسمت كل مجموعة من االطباق العشرة الى مجموعتين ثانويتين كل منهما تضم خمسة اطباق لقحت االطباق الخمسة االولى باقراص قطرها 5 ملم م نمى عليها عزلة الفطر A.niger وبمعدل قرص واحد في مركز كل طبق اما الخمسة االخرى من االطباق فلقحت باالسلوب السابق نفسه باقراص قطرها 5 ملم م نمى عليها عزلة الفطر Penicillium اما محتوى الدورق الثالث فت رك من دون اضافة البكتريا وصبت محتوياته من PDA في 65 اطباق ايضا لقحت خمسة منها باقراص من عزلة الفطر A.niger والخمسة االخرى باقراص من عزلة الفطر Penicillium. واعتبر )معاملة السيطرة ) 3 بعد ذلك ح ضنت جميع االطباق بدرجة حرارة )2±25( م لمدة اسبوع بعدها ح سبت اقطار النمو باخذ معدل قطرين متعامدين للمستعمرات النامية ومن ثم طبقت معادلة Abbottالواردة في شعبان والمالح )1993( لحساب نسبة التثبيط 3.-.- : أهمية الرقم الهيدروجيني في نمو الفطرين A.niger و : Penicillium حضر الوسط Broth(PDB) Potato Dextrose وفقا للطريقة الموضحة في الفقرة )2-1-2( ووزع الوسط على 18 دورق حجم 25 مل وبمعدل 2 مل لكل دورق بعدها تم تعديل الرقم الهيدروجيني لستة دوارق منها الى رقم PH 3 والستة األخرى إلى رقم PH 6 والستة األخيرة إلى الرقم الهيدروجيني PH 9 بعدها ق سمت مجموعة الدوارق األولى )6 دورق( ذات الرقم الهيدروجيني )3( إلى مجموعتين ثانويتين متساويتين )كل مجموعة 3 دورق( لقحت المجموعة األولى منها بأقراص قطرها) 5 ( ملم من PDA الم نمى عليه الفطر A.niger وبواقع قرص واحد لكل دورق أما المجموعة الثانية فلقحت بالطريقة السابقة نفسها ولكن بأقراص م نمى عليها الفطر. Penicillium وهكذا كررت العملية مع مجموعتي الدوارق ذات الرقم 6 و 9 3 ح ضنت جميع الدوارق بدرجة حرارة )2±25 ) م ولمدة اسبوعين بعدها تم استخراج الغزل الفطري من كل دورق ولكل رقم هيدروجيني بوساطة ملقط معقم و وضعت على ورق ترشيح No.4( )Whatman ومن ثم تم غسلها بالماء المقطر إلزالة العوالق منها بعدها جففت بالفرن الكهربائي بدرجة حرارة 7 م لمدة 24 ساعة ثم وزنت بميزان حساس 3)1958 Cochrane(.-.-6 : تأثير التراكيز المختلفة من ملح NaCl على نمو الفطرين A.niger و : Penicillium حضر الوسط Broth(PDB) Potato Dextrose وفقا للطريقة الموضحة في الفقرة )2-1-2-3( ووزع الوسط على 18 دورق حجم 25 مل وبمعدل 2 مل لكل دورق بعدها تم اضافة الملح بتركيز. غم / لتر لستة دوارق منها والستة األخرى بتركيز غم / لتر والستة األخيرة وبتركيز غم / لتر بعدها ق سمت مجموعة الدوارق األولى )6 دورق( ذات التركيز )3( إلى مجموعتين ثانويتين متساويتين )كل مجموعة 3 دورق( لقحت المجموعة األولى منها بأقراص قطرها) 5 ( ملم من PDA الم نمى عليه الفطر A.niger وبواقع قرص واحد لكل دورق أما المجموعة الثانية فلقحت بالطريقة السابقة نفسها ولكن بأقراص م نمى عليها الفطر. Penicillium وهكذا كررت العملية مع مجموعتي الدوارق ذات التركيزين ) ) غم / لتر 3 ح ضنت جميع الدوارق بدرجة حرارة )2±25 ) م ولمدة اسبوعين بعدها تم استخراج الغزل الفطري من كل دورق وبنفس االسلوب الوارد بالفقرة السابقة 3.-.- : تأثير طبيعة الوسط الزرعي على نمو الفطرين A.niger و : Penicillium تم تحضير االوساط الزرعية PDB( و YEB و ) NB بالطرق نفسها الموضحة في الفقرات (.-.-6-. و.-.-6-. و.-.--6 ) على التوالي ووزع وسط PDB( ) على ).( دورق سعة 5 مل وبمعدل 25 مل عقمت الدوارق في جهاز الموصدة )Autoclave( بدرجة حرارة 121 م وضغط 1 جو لمدة 2 دقيقة وبعدها تركت لتبرد ثم ر جت الدوارق جيدا بعدها لقح الدورق االول منها بأقراص قطرها) 5 ( ملم من الفطر A.niger
% التردد وبواقع قرص واحد والدورق الثاني باقراص م نمى عليها الفطر. Penicillium وهكذا كررت العملية مع الوسطين YEB( و Leben( ) NB واخرون 1987( ح ضنت جميع الدوارق بدرجة حرارة )2±25 ) م ولمدة اسبوعين بعدها تم استخراج الغزل الفطري من كل دورق وبنفس االسلوب الوارد بالفقرة السابقة 3.-.-: تأثير درجات الحرارة المختلفة على نمو الفطرين A.niger و : Penicillium حضر الوسط Potato Broth(PDB) Dextrose وفقا للطريقة الموضحة في الفقرة )2-1-2-3( ووزع الوسط على )6 ) دوارق حجم 25 مل وبمعدل 2 مل لكل دورق بعدها قسمت الدوارق الى ثالثة مجاميع كل مجموعة تحتوي على ).( دورق لقحت المجموعة األولى منها بأقراص قطرها) 5 ( ملم من الفطر A.niger وبواقع قرص واحد للدورق االول وأقراص م نمى عليها الفطر. Penicillium للدورق الثاني وهكذا كررت العملية مع المجموعتين الثانية والثالثة من الدوارق 3 ح ضنت دوارق المجموعة االولى بدرجة حرارة )5.2± ) م والمجموعة الثانية بدرجة حرارة )5.2± ) م والمجموعة الثالثة بدرجة )2±5 ) م ولمدة اسبوعين بعدها تم استخراج الغزل الفطري من كل دورق وبنفس االسلوب الوارد بالفقرة السابقة 3.. : التحليل األحصائي نفذت التجارب جميعا وفقا للتصميم كامل العشوائية (Complete Random Design ( CRD كتجارب أحادية و ثنائية العامل وتمت مقارنة المتوسطات بأحتساب أقل فرق معنوي Less Signification LSD Differences وتحت مستوى معنوية 535 )الراوي وخلف هللا 198( 3 3- النتائج والمناقشة :.-6 : الفطريات المعزولة من بذور فستق الحقل : تم عزل نوع واحد تابع الى الجنس Aspergillus باالضافة الى الفطرspp3 Penicillium والفطر spp. Fusarium اذ تم الحصول على ) ) عزلة من الفطر A.niger وبتردد بلغ.%.3 في حين كان عدد عزالت الفطر )( Penicillium عزالت وبتردد %663 وكان اقل العزالت التي تم الحصول عليها تابعة للفطر )6( Fusarium وبتردد % 63 )الشكل 3)1 سجل الفطر.A niger اعلى نسبة للتردد كونه يعتبر من الفطريات الرمية ذات االنتشار الواسع في الترب المختلفة ( Hillocks و Waller 699 ) 3 اذ له القدرة على تحمل الجفاف ومدى واسع من الشد الرطوبي وهذا ما أكدته دراسة Abdullah و Al-Bader (199) إذ تمكن Imshenetskii وآخرون )1983) من عزل كونيدات الفطر A.niger حتى من طبقة الميزوسفير Mesospher التي تصل فيها درجات الحرارة إلى حد اإلنجماد فضال عن ذلك فقد وجد أن ألبواغ الفطر.A niger القدرة على تحمل درجات حرارة مرتفعة تصل إلى 5 م ) Gabler وآخرون 55.(3 اما الفطر. spp Penicillium ايضا من الفطريات واسعة االنتشار اذ يتواجد اينما تواجدت المواد المتفسخة وتكون ابواغه منتشرة في كل مكان وتوجد انواع هذا الفطر بوفرة في التربة ( السهيلي واخرون 695 ) ويعد الفطر. spp Penicillium من الفطريات التي لها القدرة على تحمل مديات مختلفة من درجات الحرارة وهذا ما يبرر ظهوره في معظم فصول السنة ( Hamad 699 ) وفي دراسة ل Abdel Hafez )696 ) حول الفطريات المتحملة للملوحة في الترب الصحراوية وجد ان اكثر االجناس تحمال كانت Aspergillus و Penicillium ووجدت )699 Hamad ) ان الفطر Penicillium اظهر سيادته في الترب الصحراوية الى جانب الفطر Aspergillus مما يدل على قدرته على تحمل الجفاف وقدرته على النمو في الترب الفقيرة بالمادة العضوية 3 اما بالنسبة للفطر Fusarium فقد ذكر Galperin وآخرون ).55. ) القدرة على التواجد على العديد من محاصيل الحبوب مرافقا لبذور الذرة الصفراء وفستق الحقل 3 8 7 6 5 4 3 2 1 A. niger Penicillium Fusarium سلسلة 1 نوع الفطريات
الشكل )1( النسبة المئوية لتردد الفطريات المعزولة من بذور فستق الحقل.. : اهمية الرقم الهيدروجيني في نمو الفطرين A.niger و : Penicillium تشير النتائج الموضحة في الجدول )6( ان نمو الفطرين عند مستويات الرقم الهيدروجيني المختبرة كانت متقاربة حيث بلغت )536 و 5369( غم للفطرين A.niger و Penicillium على التوالي ومن دون فروقات معنوية وكان النمو عند قيم الرقم الهيدروجيني 6 و 9 متقاربا إذ بلغ و 53.9 غم على التوالي في حين لم يحدث أي نمو عند الرقم الهيدروجيني ).( وظهر اعلى نمو للفطر A.niger عند الرقم الهيدروجيني )6( اذ بلغ غم في حين كان اعلى نمو للفطر Penicillium عند الرقم الهيدروجيني )9( اذ بلغ غم ان الرقم الهيدروجيني يلعب دور مهم في نمو الكائنات الحية المجهرية ومنها الفطريات حيث وجد ان معظم الفطريات تنمو بمدى من الرقم الهيدروجيني يتراوح بين 9-3 في حين الرقم الهيدروجيني االمثل ينحصر بين Isabel( PH 6 -PH 5 واخرون 555. ) يؤثر الرقم الهيدروجيني كثيرا في عملية نفاذية االيونات عبر الغشاء الخلوي للكائنات الحية ومنها الفطريات حيث اوضحت نتائج االبحاث العلمية ان افضل حالة لنفاذية االيونات الموجبة والسالبة عبر الغشاء البالزمي للفطريات يحدث عند الرقم الهيدروجيني الواقع بين ( 6-5.5( اما اذا زاد الرقم الهيدروجيني عن هذا المستوى فتحدث زيادة في نفاذية االيونات الموجبة على حساب كمية االيونات السالبة والعكس صحيح مما يخلق حالة من عدم التوازن في كميات االيونات النافذة عبر الغشاء الخلوي وبالتالي ضعف نمو الفطر كما ان الرقم الهيدروجيني يؤثر على جاهزية العناصر المعدنية التي يحتاجها الفطر حيث ان الفطريات تستغل العناصر المعدنية بصورتها االيونية وهذه الصورة تتوفر عندما يكون الرقم الهيدروجيني دون )7 ) اما اذا كان الرقم الهيدروجيني اكبر من ذلك فتشكل العناصر المعدنية معقدات مع مركبات اخرى وبالتالي التكون جاهزة للفطر كعناصر المغنيسيوم والخارصين والفوسفات.)25 Kavanagh( الجدول )6( تأثير الرقم الهيدروجيني في معدل وزن الغزل الفطري )غم( للفطرين A.niger و Penicillium عند قيم PH المختلفة على وسط P.D.B معدل الوزن الجاف)غم( للفطر الرقم الهيدروجيني المعدل لمستوى PH Penicillium A.niger 3 53.5 6 53.9 53.6 9 5369 المعدل لنوع الفطر 536 : Penicillium L.S.D..5 للتداخل = 53595.64 = PH لمستوى L.S.D..5.-. : تأثير درجات الحرارة المختلفة على نمو الفطرين A.niger و بينت نتائج هذا االختبار قدرة الفطرين على النمو في المديات المختلفة من درجات الحرارة مع وجود اختالف فيي كمية النمو اذ ظهر اعلى نمو للفطر A.niger عند درجة الحرارة 3 م اذ بلغ 63.6 غم في حين كان اعلى نمو للفطر Penicillium عند درجة الحيرارة 5 م اذ بليغ 63. غيم فيي حيين كانيت كميية النميو للفطير A.niger عند درجة الحرارة 5. م و 5 م هي..53 غم و غم عليى التيوالي وللفطير Penicillium عنيد درجية الحرارة 5. م و 5. م 536 غم و 53.6 غم على التوالي وهيذه النتيائج تتفيق ميع العدييد مين الدراسيات التيي
اكدت على قدرة الفطرين موضع الدراسة على النمو فيي ميديات مختلفية مين درجيات الحيرارة فقيد اشيار كيل مين ( Hillocks و Waller 699 و Alwash 1997 ) اليييى قيييدرة االنيييواع التابعييية اليييى الجييينس Aspergillus spp عليى تحميل درجيات الحيرارة العاليية )5.-5( م ومسيتويات مختلفية مين الرطوبية إذ تمكيين Imshenetskii وآخييرون )1983) ميين عييزل كونييييدات الفطيير A.niger ميين طبقيية الميزوسييفير.A التي تصل فيها درجات الحرارة إلى حد اإلنجماد 3 فضال عين ذليك فقيد وجيد أن ألبيواغ الفطير Mesospher niger القدرة على تحمل درجات حرارة مرتفعة تصل إلى 5 م ) Gabler وآخرون 55.( 3 كما اشيار ( Hamad 699 ) ان الفطر. spp Penicillium من الفطريات التي لها القدرة على تحميل ميديات مختلفية من درجات الحرارة وهذا ما يبرر ظهره في معظيم فصيول السينة كميا اكيد )55. Nick ) ان انيواع جينس Penicillum فأنها لها القدرة ان تنميو فيي درجيات حيرارة تتيراوح بيين ( - 5 ) م وتنيتج سيم االوكراتوكسيين )Ochratoxins( في درجة حرارة م 3 الجدول ).( تأثير درجات الحرارة المختلفة في معدل وزن الغزل الفطري )غم( للفطرين A.niger و 3 P.D.B على وسط Penicillium معدل الوزن الجاف )غم(عند درجات الحرارة ( م ) نوع الفطر 5.5.5 63.6 53.. A.niger 63. 53.6 536 Penicillium 536. = L.S.D ).5(.- : تأثير التراكيز المختلفة لملح NaCl على نمو الفطرين A.niger و : Penicillium تشير النتائج الموضحة في الجدول ).( على قدرة الفطرين موضع الدراسة على النمو عند تراكيز الملح المختبرة ولكن بكميات مختلفة كما تبين النتائج اعاله ان نمو الفطرين يزداد بزيادة تركيز الملح حيث كان اعلى نمو للفطرين A.niger و Penicillium عند التركيز 5. غم /لتر اذ بلغ ( 53.9 ) غم على التوالي في حين كانت كمية النمو للفطرين A.niger و Penicillium عند التركيزين ( 65.5 ) غم / لتر ( 5366 و ) 53.6 غم و ( 536..53 ) غم على التوالي 3 وهذه النتائج تتفق مع العديد من الدراسات التي اكدت على قدرة الفطرين موضع الدراسة على تحمل تراكيز ملحية عالية في االوساط الزرعية تتراوح بين )65 5. ) % ( Radwan واخرون ) 69 كما ذكر Griffin و 696( Luard ) ان للفطر A. niger وانواع اخرى من جنس Aspergillus القدرة على تحمل الظروف البيئية المختلفة مثل الجفاف والملوحة والحرارة 3 الجدول ).( تأثير التراكيز المختلفة من الملح NaCl( ) في معدل وزن الغزل الفطري )غم( للفطرين A.niger و Penicillium على وسط P.D.B وفي درجة حرارة )2±25 ) م 3 تراكيز الملح NaCl )غم / لتر( معدل الوزن الجاف)غم( للفطر المعدل لتركيز الملح Penicillium A.niger 536 536 5366 65 53.. 53.6 6 53.9.5 المعدل لنوع الفطر
(.5) L.S.D لتركيز الملح= 5. (.5) L.S.D للتداخل = 5.- : تأثير نوع الوسط الزرعي على نمو الفطرين A.niger و : Penicillium بينت النتائج الموضحة في الجدول ( ) على قدرة الفطرين موضع الدراسة على النمو في اوساط مختلفة من حيث التركيب الكيميائي ولكن كمية النمو تختلف من وسط الخر اذ يعتير الوسط PDB وسط مالئم لنمو الفطرين حيث سجل الفطرين A.niger و Penicillium اعلى كمية للنمو فيه اذ بلغ )63.63 ) غم على التوالي في حين كان نمو الفطرين في الوسطين YEB( و ) NB..53 و.18 غم على التوالي للفطر A.niger و 53.6 و.536 غم على التوالي للفطر 3 Penicillium يعد التركيب الكيمياوي للوسط الزرعي من العوامل المهمة لنمو الفطريات ( Gunst واخرون 23( اذ ان االوساط الحاوية على نسبة عالية من البروتين ونسبة منخفضة من الكاربوهيدرات تكون جيدة لنمو اغلب الفطريات Bullermen( 696 ) وللمصادر الكاربونية والنتروجينية الموجودة بالوسط الزرعي و المستخدمة كمصدر للطاقة فهي ايضا تلعب دورا مهما في نمو الفطريات على اختالف انواعها فذكر ان السكريات البسيطة مثل الكلوكوز والسوربيتول تدعم نمو الفطر وتكوين االبواغ وبالتالي لها تاثيرا على انتاج المنتجات االيضية للفطر وخصوصا السموم ( 3 ) 699. Luchase و Harrigan الجدول )( تأثير نوع الوسط الزرعي في معدل وزن الغزل الفطري )غم( للفطرين A.niger و Penicillium معدل الوزن الجاف)غم( للفطر Penicillium A.niger 1.43 1.48 53.6.33 536. 536 5365 5366 الوسط الزرعي PDB YEB NB المعدل لنوع الفطر 536 = L.S.D ).5(.-6 : اختبار كفاءة البكتريا Pseudomonas fluorescens في تثبيط النمو الشعاعي للفطرين A.niger. و Penicillium عند مزجه مع الوسط الزرعي 3 اظهرت النتائج الموضحة في الجدول ) ) قدرة البكتريا Pseudomonas fluorescens في تثبيط نمو الفطرين حيث بلغت نسبة التثبيط % 655 لكليهما عند التركيز. غم / لتر ( الصورة ) 6 في حين اظهر الفطر A.niger مقاومة ضعيفة لفعل البكتريا عند التركيز 6 غم / لتر اذ بلغت نسبة التثبيط..93 % في الوقت الذي كانت نسبة التثبيط للفطر Penicillium وبالتركيز نفسه % 63 3 وهذه النتائج تتفق مع العديد من الدراسات التي بينت ان بكتريا.P fluorescens أحتلت مركز الصدارة في هذا المجال ولذلك فهي تستخدم بشكل كبير في السيطرة الحيوية على بعض األمراض النباتية الناتجة عن االصابة بالفطريات الممرضة وخاصة االجناس Penicillium و Girija ) Aspergillus و Kumar.55 ) 3 وقد نسبت القدرة التثبيطية لبكتريا Ps. fluorescens الى قدرتها على انتاج أنواع متعددة من المضادات الحيوية ( Dowling
Oomycine و Oligomycine ) اذ تم تشخيص عدة أنواع من المضادات الحيوية تتضمن 699 O'gara و (PCA) Phenazine-1-carboxylic acid و (Plt) Pyoluterin و (Pln) Duffyl ( Pymolnitrin و Defago 699 Kang وآخرون 699 Thrane وآخرون 6999 ) 3 وتعد المضادات الحيوية إحدى أهم اآلليات المستعملة في تثبيط المسببات المرضية فقد وجد Pal وآخرون )556. ) ان المضادات الحيوية التي تنتجها بكتريا P.f في تضادها مع.F graminearum و.F moniliforme والتي تسبب عفن قاعدة الساق و الجذور والبذور في محصول الذرة الصفراء فضال عن إفرازها لمرتبطات الحديد SiD) )Sidrophores والمضادات الطيارة (AfV) Antifungal Volatiles والتي ساعدت في خفض مستوى شدة اإلصابة بهذه الفطريات بنسبة %6 كما وجد ( Mathre واخرون.55.( ان للبكتريا P.fluorescens المقدرة على انتاج المركب -DPG ) Diacetylphloroglucinol 2,4 )الذي يعمل على تثبيط نمو العديد من الفطريات المسببة المراض تعفن الجذور والذبول وسقوط البادرات وانه يؤدي دورا في كبح نشاط العديد من المسببات المرضية 3 كما يعد اشتراك بكتريا P.f في التنافس مع المسببات المرضية على المغذيات وكذلك إفراز مغذيات الجذور من المواد العضوية إحد أهم اآلليات التي من خاللها تستطيع البكتريا تعليل أو منع حدوث األمراض ولقد اقترحت بعض الدراسات أن كفاءة البكتريا في التضاد مع المسببات المرضية يعود في األساس الى التنافس على الغذاء فعند تنمية البكتريا P.f مع المسبب المرضي على وسط غذائي متخصص لتنمية المسبب المرضي فقط فان البكتريا تقل كفاءتها في الحد من نمو المسبب المرض Elad( و Chet 69 ) 3 وأثبت الجميلي والوائلي ( 555. ) كفاءة ساللة P.f في تثبيط نمو الفطرين.F graminearum و.R solani فضال عن معدل خفض إصابة هذين الفطرين لنبات الحنطة إلى 36 و.3. % على التوالي في الوقت الذي جاوزت. % في معاملة المقارنة نتيجة لدور البكتريا P.f في استحثاث المقاومة المستحثة في نباتات الحنطة كما أدى استخدام البكتريا إلى زيادة في ارتفاع النبات وعدد األشطاء والوزن الجاف والمجوع الخضري والجذري 3
الصورة )6( تقويم كفاءة البكتريا Pseudomonas fluorescens في تثبيط النمو الشعاعي للفطر.A niger و الفطر Penicillium في حالة المزج مع الوسط الزرعي 3 PDA : معاملة البكتريا ( بتركيز. غم / لتر ونسبة التثبيط %( 655 B معاملة السيطرة : A الجيدول ( ) : تأثيير البكترييا Pseudomonas fluorescens فيي تثبييط النميو الشيعاعي للفطيرين niger 3PDA في حالة مزجه مع الوسط الزرعي Penicillium و Aspergillus نوع الفطر التركيز )غم / لتر( معدل قطر مستعمرة الفطر نسبة التثبيط ( % ) 5 9 Penicillium 63 53. 6 655. 5 9 A. niger 93.. 536 6 655. 36 L.S.D(.5) مالحظة : كل رقم يمثل ثالثة مكررات 3 المصادر
- اكريوس ج 3 م 3 3 69 امراض النبات 3 ترجمة فياض محمد شريف 3 جامعة الموصل 3 أبو هيلة عبد هللا ناصر 69 3 أساسيات علم الفطريات عمادة شؤون المكتبات جامعة الملك سعود الرياض 3 ص.. 3 - جاسم ناجي سالم. )1994(. المقاومة الحيوية والكيمائية للفطرSchwab Fusarium graminearm المسبب لمرض لفحة الفيوزيرم في الحنطة. رسالة ماجستير- كلية الزراعة - جامعة البصرة. - - لجميلي سامي عبد الرضا ورائد علي حسين ابو شبع 55. 3 تقييم كفاءة بعض العوامل الكيمياوية والحيوية في حماية حاصل الذرة الصفراء من األصابة بالفطرين Aspergillus flavus و 3 Aspergillus niger مجلة جامعة كربالء العدد الخاص بمؤتمر كلية العلوم 66 6.55 3 - الجميلييييييي سييييييامي عبييييييد الرضييييييا الييييييوائلي ضييييييياء سييييييالم ( 555. ) 3 دراسيييييية كفيييييياءة سيييييياللة البكتريييا pf.5 Pseudomonas flourescens فييي مقاوميية الفطريييات Fusarium graminearum و Rhizoctonia solani وزيادة النمو في محصول الحنطة 3 مجلة البصرة للعلوم الزراعية. 3 (.6 ) 3 - الذهيبي رباب مجيد عبد 3.556 3 تأثير التلقيح بأنواع الفطريات Penicillium, Trichoderma and Aspergillus niger وتداخلها مع فطر المايكورايزا Glumus mosseae في نمو وانتاج نبات الباذنجان 3 رسالة ماجستير 3 كلية التربية جامعة ديإلى 3 الراوي خاشع وعبد العزيز خلف هللا 695 3 تصميم وتحليل التجارب الزراعية 3 دار الكتب للطباعة والنشر جامعة الموصل 3 ص 3 - الركابي فراس علي أحمد 3 55. 3 تأثير مستخلصات النمو الخضري لبعض األدغال على الفطريات المرضية لجذور الطماطة على فطر المقاومة األحيائية Trichoderma harzianum Rifai 3 رسالة ماجستير 3 كلية الزراعة جامعة الكوفة 3 - - شعبان عواد و نزار مصطفى المالح )1993(3 المبيدات 3 دار الكتب للطباعة و النشر-جامعة الموصل 3 ص 3.5 - عبد المجيد تحرير رمضان فهيمة عبد اللطيف صالح وهناء فاضل خميس فسلجة النبات 3 الجزء الثاني 3 وزارة التعليم العالي 369963 والبحث العلمي 3 جامعة بغداد - عبد المنعم أسامة عبد الكريم 3 55. 3 تأثير األسمدة الحيوانية في الكثافة العددية للفطريات في الترب الصحراوية وأهميتها على مؤشرات النمو وحاصل نباتات الطماطة 3 رسالة ماجستير 3 كلية الزراعة جامعة الكوفة 3 - كاظم علي عبد الحسين سعد عبد الحسين ناجي واكرم ثابت الراوي 3 55. 3 إضافة الفطر Aspergillus niger إلى عالئق فروج اللحم ساللة روز كسابق حيوي )prebiotic( ودراسة تاثيره في نسبة التصافي والنسبة المئوية للقطيعات واألحشاء الداخلية الماكولة 3 مجلة الزراعة العراقية.6 )6( 3 ميخائيل سمير و تركي بيدر )1982(3 أمراض البذور 3 دار الكتب للطباعة و النشر جامعة الموصل 3 ص 319 - - الهيتي أياد عبد الواحد ومحمد عامر فياض وعلي سيالم الغيالبي 6996 3 تطبييق تقنيية التلقييح البكتييري Pseudomonas fluorescens علييى نباتييات الييرز وتييأثيره علييى القييدرة االنتاجييية 3 مجليية ابيياء لالبحيياث الزراعية 6 )6( :. 3 - Abdel Hafez, S.I.I. (1981). Halophilic fungi of desert soils in saudi Arabia. Mycopathologia 8 : 914 - Abdel-Sater, M. A. 21.Antagonistic interaction between fungal pathogen and leaf surface fungi of.pakistan Journal of Biological Sciences 4(7):838-842.
- Abdullah, S.K. and ALBader, S.M. 199. On the thermophillic and Thermotolerand Mycoflora of Iraqi soils. Sydowia, 42:17. -Alwash,M.S. 1997.Study the community of fungi and Bacteria in Razaza desert soil.m.sc.thesis,univ.babylon ( Arabic). - Anderegg,R.J.; Biemann,K. ; Buechi,G. And Cushman, M.(1976). Malformin C,anew metabolite of Aspergillus niger. Journal of the American Chemical Society,98:365-37. - Baink, S. & Dey, B.K. (1982 ). Availabal phosphate content of an alluvial soil as influenced by inoculation of some isolated phosphate solubilizing micro organisms. plant & soil, 69 : 353 364. - Bullerman,L.B.(1981). Public health significant moulds and mycotoxin in fermented dairy products.j.dairy Sci.64:2439-2452. - Ciegler, A. B.; vesconder, H. R. and Hesseettine, C. W. (1981). Mycotoxins and N- nitoso compound: Environmental risks Applied of Microbiology. 1:1-51. - Cochrane, V.W. (1958). Physiology of fungi. Library of congress card. No.:58-13456, U.S.A. - Collee, J. G. ; Fraser, A.G. ; Marmion, B.P. and Simmons, A. (1996 ). Practical Medical Microbiology. Mackie and Maca- rthey pearson professional limited.14 th ed - Curtis, R. W.; Steven son, W.R and Tuite, J. (1974). Malformin in Aspergillus niger infected anion bulbs (Allium cepa). Applied of Microbiology. 28: 362-365. -Davis, N.D. ; Cuvrier, C.G. & Dinner, V. (1984). Aflatoxin contamination of corn hybrids in Albama Cereal Chem. 63 (6) : 467 471. - De- cal, A., Garcia Lepe, R. & Melgarego, P, ( 2). Induced resistance bynst Penicillium oxalicum against Fursarium oxysporium f. sp. Lycopersici Phytopatholohy, 9.26268.. Metabolites of Pseudomonas fluorescens in the (1994)D.N. and F.O"gara. biocontrole plant diseases.trends biocontrol 12:133-141., Dowling -Duffy, B.K. and G. Defago. ) 1997(. Zinc improve biocontrol of Fusarium crown and root rot of tomato by Pseudomonas flourescens and represses the protection of pathogen metabolites inhibitory to bacterial antibiotic biosynthesis. Phytopathology. 87: 125-1257. -Elad, Y. and I. Chet. )1987(. Possible role of competition of nutrients in biocontrol of pythium damping-off by bacteria. Phytopathology. 77: 19-195. - El-Gendy, G.A. Abd El-Rahman and K.E.I. Etman (23). The effect of replacing maize silage with peanut tops silage on performance of lambs. Egyptian Journal of Nutrition and Feeds, Vol. 6 (Special Issue)1367-1379. 3 - Farr, D.F.; Bills, G.F.; Chamuris, G.P. and Rossman, A.Y. ) 1989(.Fungi on plants and plant products in the United States. APS Press, St. Paul, MN. (2).
- Gabler, F. M., Mansour, M.F., Smilanick, J. L., and Mackey, B. E. ( 24). Survival of spores of Rhizopus stolonifer, Aspergillus niger, Botrytis cinerea and Alternaria alternate after exposure to ethanol solutions at various temperatures. Journal of Appliction Microbiology. 96(6) :1354-136. Galperin, M., S. Giraf, and D. Kenigsbuch. (23). Seed treatment prevents vertical transmission of Fusarium moniliforme making a significant contribution to disease control. Phytoparasitica. 31 (4): 344-352. - Gunst, L.;Krebs,H.;Dubois,D.;and Forrer,H.R.(23). The Effect of Farming System.,Previous Crop and Fertilization on the Ear Diseases of Wheat in the DOK Trial. Pflanzengesundheit.54:42-61. - Hamad, N.S. ( 1998 ). Microfungal community in Lraq desert Land. Ph.D. Ththesis coll. sci. univ. Babylon. -Hasan, H. A. (22 ) Gibberellin & auxinindole production by plant rootfungi & their biosynthesis under salinitycalcium interaction. Acta. Microbiol. Immunol. Hung. 49 (1) : 15 - Hillocks, R.J., and Waller J.M..(1997 ).Soil borne disease of tropical crops. CAB international. -Imshenetskii, A.A., Lysenko, S.V., Kozlova, T.M., and Novichkova, A.T. (1983). Resistance of mesospheric microorganisms to periodic freezing Thawing. Microbiologiia.52(6):92-98 -Isabel, M.;Roncero, G.; Antonio, D.; Carmen,R. M.; Dolores,H.G.M.; Garcia- Maceira, F.I. Emesa, M., Angles,C.; Rocio,S.Z.;Conch.H.;.(2).Role of cell wall degrading enzymes in pathogenicity of fusarium oxysporium.rev.iberoam Micol.,17 ; 547-553. - Jackson,C.R.(1965). Aspergillus corwn rot of Peanuts in Georgia, seed treatment fungicidrs for control of seed born fungi in Peanut. Plant Disease Reporter,46:888-892. - Jong, S.C. and Gantt, M.J. (1987). Catalogue of fungi and yeasts. 17 th edition, American type culture collection. Rockville. MD. Kaiser,W.T.and Hunnan, R.M. (1984). Biolhical contrl of seed rot and - peemerhence dampinh off of chick pea with penicillium oxalicum. Plant disease.68 : 86811. - Kang, Y., R. Carlson, W. Thrape, and M.A. Schell. )1998(. Characterization of genes involoved in biosynthesis of a novel antibiotic from Burkholderia cepacia BC11 and their role in biological control of Rhizoctenia solani. Applied and Environmental Microbiology. 64: 3939-3947 - Kanitta, S, Noppol, K, and Chiradej, C.(1991). ln vivo sereening of antagonistic fungi used fo rbiocontrol of scleerotium stem rot of Tomato Kasetsart journal, Naturalscience. 25 (5 ) : 2632. - Kavanagh, K.,(25). fungi:biology and
Application John Wiley and Sonsltd, the Atrium, southern Gate,chichester, westsussex PO 4,.England. - Khan, M.R. & Khan, S.M. (22 ). Effects of rootdip treatment with certain phosphate solubilizing microorganisms on the fusarial wilt of Tomato. Bioresour technol. 85 (2) : 213215 - Kown-Chung, K.J. and Bennet, J.E. (1992). Medical mycology.lea and Febiqer. pp :866.- Korzeniowska - Kosela, M.; Domej, J. ; Hermann, R. ; Krause, M. and Maier, A. (199). Pulmonary Aspergillosis caused by Aspegillus. Pneumonal. Pol. 58 (1):328-333. -Krebs,C.J.(1978). Ecology : The experimental analysis of distribution abundance Harper and Row publisher,new York. and - Leben,S.D.;Wadi,J.A. and E Aston,G.D.)1987(. Effect of Pseudomonas floouresns on ptotato plant growth and control of Verticillium dahlia phytopathology.77:1592-1595. - Luard, E.J. & Griffin, D.M. (1981) Effect of water potential on fungal growth & turgor. Trans.Br. Mycol. Soc. 76(1): 334. -Luchase,D. H. and Harrigan,A.M. (1993). Effect of structure of media on production of toxins by some fungi.appl.environ.microbiol.11:41-55. - Mahmoud, S.A., G.A. El- Santeil, N.M. Eweedah, S.F. Kilany and H.K. El - groundnut vine hay in rations of growing Barki Awady (23). Efficiency of using lambs system. Egyptian of Nutrition and Feeds, Vol. 6 ( Special Issue), 795-82. -Mathre, D.E., R.H. Jonston, and W.E. Grey.) 23 (. Diagnosis of Common Root Rot of Wheat and Berley.Plant Health -Ogawa, K. 1988. Damage Bakanae Disease and chemical control. Japan Pesticide information. 52 : 13-16. -Pal, K.K., K.V.B.R. Tilak, A.K. Saxcna, R. Dey, and C.S. Sing. )21(. Suppression of maize root diseases caused by Macrophonmia phaseolina, Fusarium moniliforme and Fusarium graminearum by plant growth promoting rhizobacteria. Microbiological Research. 156 (3): 29-223. - Parkash, O. and Raoof, M. A. (1989). control of mango fruit decay with post harvest application of various chemicals against black rot, stem and anthracose disease. Journal of plant disease. 6:99-16. - Pilar, M., Rosello, J., Liacer, R. & Sanchis, V. (22 ). Antagonistic activity of Penicillium oxalicum Corrie & Thom, Penicillium decumbens Thom & Trichoderma harzianum Rifai isolates against fungi, bactria & insects in vitro. Rev. Iberoam Micro., 19 : 9913. - Pitt, J.I. and Hoking, A. D. ( 1997 ). Fungi and food spoilage (second ed.) shampon and Hil l- U.K. PP : 989. - Pitt, J.l. 1979. The Genus Penicillium and its Teleomorphic States Eupenicillium and Talaromyces. London: Academic Press. 634 pp.
-Radwan, S.S, Elessawy, A.A. & Helal, G.A. (1984). Salinity loving fungi in egyption soils. I.Numbers, identities & halophilism. Zentral bi. Microbio., 139(6): 43544. (Abstract). - Raper, K.B. & Fennell, D.I. (1965). The genus Aspergillus. Williams & Wikins Company, Baltimore. 686 pp. - Samson, R.A.; Houbraken,; Summerbell, R.C.; Flannigan, B. and Miller, J.D. (21). Common and important species of fungi and actinomycetes in indoor environments In: Microorganisms in Home and Indoor work Enviroments. New York: Taylor & Francis pp. 287-292. Sharma, R. C. and Vir, D. (1987). Post harvest disease of grapes and studies on their control with benzimidazole derivatives and other fungicides- pesticides (Bombay). 2:14-15. - Sinha, P. and Saxena, S.K. (1987). Effect of treating tomatoes with leaf extract of Lantana camara on development of fruit rot caused by Aspergillus niger in prensce of Drosophila busckii. Indian Journal of Biology. 25:143-144. -Smith, J.E. ; Salomons, S. ; Lewis, G.L. & Anderson, J.G. (1994). Mycotoxin in human nutrition and health. Directorate. General XII. Science. Research and development Evr., V: (48) : 16. -Thrane, C., S. Olsson, T.H. Nielsen, and J. Resen. 1999. Vital fluorescent stains for detection of stress in Pythium ultimum and Rhizoctenia solani challenged with viscosinamide from Pseudomonas flourescens DR54. FEMS Microbiology, Ecology. 3: 11-23. - Utkahed, R.S. & Rahe, J.F. (198) Biological control of onion white rot. soil boil. Biochem. 12 : 11 14. - Ward, O.P. (1989). Fermentation biotechnology: principles, processes and products. Prentice Hall, Engale Wood cliffs. New Jersy. P. 227. - Wakelin, S. (23). Phosphorus solubilising Penicillium spp. Microbiology Australia. 24 (3) : 441. - Wood, J. B. (1998). Micro organism in foods. Academic and professional, An imprint of champan & Hall press. PP.118. - Yoshizawa, T.; Tsuc hiya, Y.; Morooka, N. and Sawada, Y. (1975), Malformin Al as a mammalian toxicant from Aspergillus niger. Journal of Biology. 39: 1325-1326. Physiological study of A.niger & Penicillium fungi that isolution from seed of Arachis hypogeae & evaluation of the efficiency the Pseudomonas flourecens bacteria in inhibition the radial growth from the two fungi. Baidaa Abood Hassan the college of Science University of Kufa
Abstract: The study was conducted in the laboratories of Biology Department college of Sciences it is clarify the Physiological study of A.niger & Penicillium fungi that isolution from seed of Arachis hypogeae & evaluation of the efficiency the Pseudomonas flourecens bacteria in inhibition the radial growth from the two fungi. The laboratory experiments showed that the optimal ph for fungi growth in term of average dry weight for A. niger & Penicillium were ph 6 with.35 gm and ph 9 with.38 gm respectively but no growth about two fungi in ph 3. This study showed that efficiency from the two fungi growth in different of temperature level the optimal temp. for fungi growth in term of average dry weight for A. niger & Penicillium were 3c with 1.36 gm and 4 c with 1.38 gm respectively but the growth for A. niger in 2c & 4c with.23 gm and.28 gm respectively the growth for Penicillium in 2c &3c with.18 gm and.26 gm respectively also The laboratory experiments showed that efficiency A. niger & Penicillium growth in different of solt Nacl concentration, the optimal Nacl Con. for fungi growth in term of average dry weight for A. niger & Penicillium were 3 gm/l with.39gm &.37gm respectively but the growth about two fungi in 1&2 gm/l with(.16,.26) gm, (.14,.22 ) gm respectively This study showed that efficiency from the two fungi growth in different of clture media but the optimal media for fungi growth in term of average dry weight for A. niger & Penicillium were PDB with (1.48, 1.43)gm respectively but the growth about two fungi in YEB&NB with (.33,.18)gm respectively for A. niger & (.26,.16) gm respectively for Penicillium. also The laboratory experiments proved the Pseudomonas flourecens bacteria had ahigh effect in inhibition the radial growth in concentration 2 g / L where the inhibition rate attained 1 % to the both two fungi.